P·01 Produkte / Immuncheckpoint
Klon TG1 · Kat.-Nr. DIA-TG1-M · RRID AB_3750391
11 klonspezifische peer-reviewte Publikationen
Vollständige Liste mit DOI und PMID: Publikationen.
Monoklonaler Mausantikörper für die Untersuchung von TIGIT in humanem FFPE-Gewebe. Klon TG1 wurde in elf begutachteten Studien über Klon- oder Katalogbezeichnung identifiziert — von Brightfield-IHC über Färbeautomaten bis zur Fluoreszenz-Multiplex-IHC.
TG1 wird in elf begutachteten Publikationen ausdrücklich über Klon- oder Katalogbezeichnung identifiziert — u. a. Hodgkin-Lymphom, Seminom, Lungenkarzinom, Gallenblasenkarzinom, kolorektales Karzinom, Melanom, Uveamelanom, kutanes Plattenepithelkarzinom und Merkelzellkarzinom. Drei AACR-2018-Kongressposter sind separat dokumentiert (Abschnitt P·09) und werden nicht zu diesen Publikationen gezählt.
Eine systematische Untersuchung wertete 1.778 Tumoren aus 86 Tumorentitäten aus und dokumentierte TG1 außerdem in Normal- und Entzündungsgeweben; berichtete Prüfungen umfassten Western Blot, ELISA und Präabsorption mit TIGIT-Protein.
Dokumentierte manuelle und Leica-Bond-RX-Ausgangsprotokolle des Herstellers; unabhängige Studien berichten Dako Autostainer Link 48, Agilent Omnis und Fluoreszenz-Multiplex-IHC. Bedingungen sind im eigenen Labor zu validieren.
IHC-Bildgalerie und ONCOdianova-Referenzabbildungen: Abschnitt P·03 ↓
P·02 Technische Daten
| Produkt | Anti-TIGIT (Human) aus Maus |
|---|---|
| Klon | TG1 (monoklonal) |
| Katalognummer | DIA-TG1-M (historische Bezeichnung: DIA-TG1) |
| Katalognummer Vertrieb | ODN-DIA-TG1-M (BIOZOL) |
| RRID | AB_3750391 |
| Target | TIGIT — T-cell immunoreceptor with Ig and ITIM domains (Gene ID 201633, UniProt Q495A1) |
| Immunogen | Rekombinantes Peptid aus der extrazellulären Domäne des humanen TIGIT |
| Isotyp | Mouse IgG1/κ |
| Reaktivität | Human |
| Konjugation | unkonjugiert |
| Format | 100 µl, lyophilisiert; gereinigter Antikörper aus Kulturüberstand |
| Rekonstitution | Mit sterilem Aqua dest. auf 100 µl auffüllen; 10 Minuten vorsichtig schütteln |
| Formulierung | PBS, pH 7,4, 2 % BSA, 0,05 % Natriumazid · BSA-freie, hochkonzentrierte Variante auf Anfrage |
| Anwendungen | IHC an FFPE-Gewebe; Western Blot |
| IHC-Ausgangsbereich | 1:50 – 1:150 — 1:50 bei Biotin/(Strept)Avidin-basierter Detektion, 1:100–1:150 bei Polymer-basierter Detektion; die optimale Verdünnung ist vom Anwender für Gewebe, Fixierung, Plattform und Detektionssystem zu bestimmen |
| Epitopdemaskierung | Hitzeinduzierte Epitopdemaskierung erforderlich; empfohlen: Autoklav 121 °C, 5 min, Tris-EDTA-Citrat pH 7,8 |
| Positivkontrolle | Tonsille |
| Färbemuster | Membranös (Lymphozytensubtypen) |
| Lagerung | Lyophilisat bei 2–8 °C; langfristig bei −20 °C (mindestens ein Jahr stabil); rekonstituiert kurzfristig bei 2–8 °C (mehrere Wochen); wiederholtes Einfrieren und Auftauen vermeiden |
| Status | Research Use Only |
Soweit nicht unabhängig belegt (RRID-, Gen- und Protein-Einträge verweisen auf ihre Register; publizierte Färbebedingungen sind im Abschnitt Publikationen mit Quelle dokumentiert), sind die technischen Angaben dieser Tabelle Herstellerangaben aus Datenblatt V17 (25.02.2025) und Tech Note V1 (11/2019). Historische DIA-TG1-Angaben (u. a. 200 µg und 0,4 mg/ml) dürfen nicht automatisch auf das aktuelle Produkt DIA-TG1-M (100 µl) übertragen werden. Publizierte Verdünnungen reichen je nach Studie und Verfahren von 1:25 bis 1:150; jedes Labor validiert seine eigenen Bedingungen.
P·03 IHC-Galerie
7 Abbildungen (10 Bilder) aus Tech Note V1 und Datenblatt V17, dort ausdrücklich dem Klon TG1 zugeordnet – Originalaufnahmen von ONCOdianova in der in den PDFs eingebetteten Auflösung: Tonsille in drei Vergrößerungen, Demaskierungsvergleich auf dem Leica Bond RX, Western Blot, Tonsille (Datenblatt), Hashimoto-Thyreoiditis, kolorektales Karzinom und Sarkoidgranulom.
Mikrofotografien der TG-1-Immunfärbung an humaner Tonsille bei 100×, 200× und 400× (ONCOdianova-Referenzabbildungen, Tech Note V1, Abb. 1).
Antikörperverdünnung 1:50 · Antigendemaskierung: Autoklav in TEC-Puffer (Tris-EDTA-Citrat, pH 7,8) bei 121 °C für 5 min · Zeiss-Axiocam-MRc-Kamera, AxioVision SE64, Zeiss Axioskop 40 · keine Bildverstärkung oder Manipulation. Bilder in der im Tech-Note-PDF eingebetteten Auflösung.
ONCOdianova-Referenzabbildung · Klon TG1 im Quelldokument beschriftetNormale humane Tonsille mit zahlreichen TIGIT-positiven Lymphozyten (ONCOdianova-Referenzabbildung, Datenblatt V17, Abb. A).
Überschrift des Abbildungsblocks im Datenblatt: „Immunohistochemistry of human TG1 in routine formalin-fixed paraffin-embedded tissue samples“. Anderes Gesichtsfeld als die Tonsillenserie der Tech Note. Auflösung wie im Datenblatt-PDF eingebettet (346 × 211 px).
ONCOdianova-Referenzabbildung · Klon TG1 im Quelldokument beschriftetTIGIT-IHC an Tonsille nach hitzeinduzierter Epitopdemaskierung bei pH 9,0 (links) gegenüber pH 6,0 (rechts), Leica Bond RX (ONCOdianova-Referenzabbildungen, Tech Note V1, S. 5).
Das Signal bei pH 9,0 ist deutlich stärker als bei pH 6,0 – ein Demaskierungsvergleich, kein Spezifitätsnachweis.
ONCOdianova-Referenzabbildung · Klon TG1 im Quelldokument beschriftetWestern Blot mit rekombinantem TIGIT-Protein als Zielantigen für TG-1 (ONCOdianova-Referenzabbildung, Tech Note V1, Abb. 2). Ansteigende Mengen rekombinantes TIGIT (ng); Antikörper 1:500 in 5 % Milch/PBST; Bande bei ca. 20 kDa.
Belegt die Bindung des Antikörpers an das rekombinante Protein unter den genannten Bedingungen. Für sich allein kein Nachweis der Spezifität in jeder IHC-Anwendung.
ONCOdianova-Referenzabbildung · Klon TG1 im Quelldokument beschriftetEntzündliches lymphoides Infiltrat bei Hashimoto-Thyreoiditis (ONCOdianova-Referenzabbildung, Datenblatt V17, Abb. C).
Gleiche Aufnahme und gleiche Legende wie Datenblatt V17, Abbildung C („Immunohistochemistry of human TG1 in routine FFPE tissue samples“); das Datenblatt zeigt einen Ausschnitt dieses Originals (1772 × 1181 px).
ONCOdianova-Referenzabbildung · Klon TG1 im Quelldokument beschriftetTumorinfiltrierende Lymphozyten in einem kolorektalen Karzinom (ONCOdianova-Referenzabbildung, Datenblatt V17, Abb. B).
Das Datenblatt weist selbst darauf hin, dass in einigen epithelialen Geweben, z. B. beim Kolonkarzinom, eine schwache unspezifische nukleäre/nukleoläre Färbung auftreten kann – als TIGIT-Signal gilt nur die membranöse Lymphozytenfärbung. Auflösung wie im Datenblatt-PDF eingebettet (346 × 211 px).
ONCOdianova-Referenzabbildung · Klon TG1 im Quelldokument beschriftetSarkoidgranulom, durchsetzt von TIGIT-positiven Lymphozyten (ONCOdianova-Referenzabbildung, Datenblatt V17, Abb. D).
Auflösung wie im Datenblatt-PDF eingebettet (346 × 212 px).
ONCOdianova-Referenzabbildung · Klon TG1 im Quelldokument beschriftet41 Fälle aus der Galerie der bisherigen Website. Sie dokumentieren TIGIT-positive Lymphozyten in normalem lymphatischem Gewebe, Schleimhaut und Tumoren verschiedener Organe.
Starke TIGIT-Expression in einer großen Zahl tumorinfiltrierender Lymphozyten in einem Seminom mit dichtem lymphozytärem Infiltrat.
Starke TIGIT-Expression in tumorinfiltrierenden Lymphozyten in einem Seminom mit spärlichem lymphozytärem Infiltrat.
Hoher Anteil TIGIT-positiver Zellen in peritumoralen Lymphozyten bei einem Peniskarzinom.
Niedriggradiges neuroendokrines Karzinom mit verstreutem Infiltrat TIGIT-positiver Lymphozyten.
Hochgradiges neuroendokrines Karzinom mit fokaler Ansammlung TIGIT-positiver Lymphozyten.
Dichtes peritumorales und intratumorales Infiltrat TIGIT-positiver Lymphozyten bei einem gering differenzierten Plattenepithelkarzinom des Ösophagus.
Hohe Frequenz TIGIT-positiver Lymphozyten in einem lymphoepithelialen Karzinom.
Dichtes peritumorales Infiltrat TIGIT-positiver Lymphozyten in einem Plattenepithelkarzinom des Larynx.
Invasives Urothelkarzinom mit dichtem peritumoralem und intratumoralem Infiltrat TIGIT-positiver Lymphozyten.
TIGIT-IHC, Übersicht und Detail.
Hohe Frequenz TIGIT-positiver Lymphozyten in einem Hodgkin-Lymphom.
TIGIT-positive Lymphozyten im peritumoralen und intratumoralen lymphozytären Infiltrat eines Plattenepithelkarzinoms der Lunge.
Hohe Frequenz TIGIT-positiver intratumoraler Lymphozyten in einem Plattenepithelkarzinom der Lunge.
TIGIT-positive Lymphozyten liegen peritumoral, nicht intratumoral, in einem Plattenepithelkarzinom.
Spärliche TIGIT-positive Lymphozyten in einem Plattenepithelkarzinom der Lunge mit ausgeprägter desmoplastischer Reaktion.
Hohe Dichte TIGIT-positiver Lymphozyten in einem Plattenepithelkarzinom der Lunge.
TIGIT-positive Lymphozyten in einem bronchioloalveolären Karzinom der Lunge.
Hohe Frequenz TIGIT-positiver Lymphozyten in einem Adenokarzinom der Lunge.
Hohe Frequenz peritumoraler TIGIT-positiver Lymphozyten in einem großzelligen Adenokarzinom der Lunge.
Zahlreiche TIGIT-positive Lymphozyten in einem Adenokarzinom der Ampulla Vateri.
Hohe Zahl TIGIT-positiver Lymphozyten in einem Angiosarkom.
Häufige TIGIT-positive Lymphozyten in einem Liposarkom.
Zahlreiche TIGIT-positive Lymphozyten in einem Warthin-Tumor.
Dichte Infiltration eines Ovarialkarzinoms durch TIGIT-positive Lymphozyten.
Plattenepithelkarzinom der Cervix uteri mit zahlreichen intratumoralen TIGIT-positiven Lymphozyten.
Plattenepithelkarzinom der Cervix uteri mit peritumoralem und intratumoralem Infiltrat TIGIT-positiver Lymphozyten.
Plattenepithelkarzinom der Cervix uteri mit reichlichem intratumoralem Infiltrat TIGIT-positiver Lymphozyten.
Plattenepithelkarzinom der Cervix uteri mit hoher Zahl intratumoraler TIGIT-positiver Lymphozyten.
Peritumorale TIGIT-positive Lymphozyten bei einem Endometriumkarzinom.
Hohe Dichte TIGIT-positiver Lymphozyten in einem medullären Mammakarzinom.
Medulläres Mammakarzinom mit zahlreichen TIGIT-positiven Lymphozyten.
Hohe Dichte peritumoraler und intratumoraler TIGIT-positiver Lymphozyten in einem medullären Mammakarzinom.
TIGIT-positive Lymphozyten im subepithelialen Gewebe der Lippe (orales Epithel).
Mundschleimhaut mit TIGIT-positiven Lymphozyten im subepithelialen Stroma.
Mundschleimhaut mit intraepithelialen und subepithelialen TIGIT-positiven Lymphozyten.
Zahlreiche TIGIT-positive Lymphozyten in der Milz.
TIGIT-positive Lymphozyten sind im Thymus häufig.
Thymus mit hoher Zahl TIGIT-positiver Lymphozyten.
TIGIT-positive Lymphozyten sind in der Appendixschleimhaut zahlreich.
Appendixschleimhaut mit dichter Ansammlung TIGIT-positiver Lymphozyten.
Appendixschleimhaut mit TIGIT-positiven Lymphozyten.
Vergrößerungsangabe laut Originaldateiname; Übersicht links, Detail rechts.
Alle Bilder und Legenden sind Originalmaterial von ONCOdianova. Die klonzugeordneten Referenzabbildungen umfassen sämtliche in Tech Note V1 und Datenblatt V17 eingebetteten Abbildungen, aus den PDFs in der dort eingebetteten Auflösung extrahiert; sie dokumentieren die Färbung mit Klon TG1 unter den genannten Bedingungen. Die historische Galerie veranschaulicht die Gewebe, die mit der Anti-TIGIT-Immunhistochemie von ONCOdianova untersucht wurden. Keines der Bilder ist eine Leistungszusage für andere Labore, Plattformen oder Protokolle.
P·04 Dokumentierte Ausgangsprotokolle
Historische Ausgangsprotokolle. Beide Verfahren stammen aus der Tech Note V1 (November 2019), die noch für das Vorgängerformat DIA-TG1 (200 µg, 0,4 mg/ml, Rekonstitution in 500 µl) geschrieben wurde. Diese Mengen- und Konzentrationsangaben sind keine Spezifikation des aktuellen Produkts DIA-TG1-M (100 µl, Rekonstitution in 100 µl). Die Verdünnungen sind Ausgangswerte; jedes Labor validiert Gewebe, Fixierung, Plattform und Detektion selbst.
* TBST-Waschpuffer (#K8000, DAKO)
** 5 min inkubieren, nachdem der Autoklav 121 °C erreicht hat
*** TEC-Stammlösung = 20× Tris-EDTA-Citrat-Puffer: pro 1 l Aqua dest. 5 g Trizma Base (Sigma T 1503), 10 g EDTA (Merck 1.08418.0250), 6,4 g Trinatriumcitrat (Sigma C 0909) lösen; mit 1 mol/l HCl auf pH 7,8 einstellen
Laut Datenblatt V17 wurde ein automatisiertes Protokoll auf dem Leica Bond RX etabliert. Unabhängige Publikationen dokumentieren zusätzlich den Einsatz auf Dako Autostainer Link 48 und Agilent Omnis (siehe Publikationen).
Dispensiervolumen laut Tech Note 150 µl je Schritt. Die Tech Note zeigt zusätzlich eine Tonsillenfärbung im Vergleich HIER pH 9,0 gegen pH 6,0 mit deutlich stärkerem Signal bei pH 9,0 – siehe Referenzabbildung „Bond RX, HIER pH 9,0 / pH 6,0“ in der IHC-Galerie (P·03).
P·05 Leitfaden zur Interpretation
Der Hersteller beschreibt eine membranöse Färbung verschiedener Lymphozytensubtypen. Tonsille ist die dokumentierte Positivkontrolle; in der publizierten TMA-Studie wurde TIGIT in CD8+-, CD4+- und FOXP3+-T-Zellen sowie NK-Zellen nachgewiesen, nicht aber in B-Zellen, Makrophagen oder dendritischen Zellen.[1]
Datenblatt V17 und Tech Note V1 geben an, dass in einigen epithelialen Geweben, zum Beispiel beim Kolonkarzinom, eine schwache unspezifische nukleäre oder nukleoläre Färbung auftreten kann. Ein solches Signal ist nicht als TIGIT-Positivität zu werten; Positiv- und Negativkontrollen parallel mitführen.
Western Blot, ELISA und Präabsorption sind als Spezifitätsprüfungen berichtet,[1] und der Hersteller zeigt die Bindung an rekombinantes TIGIT. Nichts davon belegt eine diagnostische oder prädiktive Leistung. Nur für Forschungszwecke.
P·06 Target-Hintergrund
TIGIT (T-cell immunoreceptor with Ig and ITIM domains; auch VSTM3, VSIG9) ist ein inhibitorischer Rezeptor der Poliovirus-Rezeptor/Nectin-Familie. Nach Bindung seiner Liganden CD155 (PVR) und CD112 (Nectin-2), die auf antigenpräsentierenden Zellen exprimiert werden, vermittelt er hemmende Signale an T-Zellen und NK-Zellen (UniProt Q495A1).
In humanem FFPE-Gewebe, das mit Klon TG1 untersucht wurde, fand sich TIGIT in CD8+-zytotoxischen T-Zellen, CD4+-T-Helferzellen, FOXP3+-regulatorischen T-Zellen und NK-Zellen, nicht aber in CD11c+ dendritischen Zellen, CD68+-Makrophagen oder CD20+-B-Lymphozyten. Die TIGIT-Expression verlief parallel zu PD-1: mehr als 70 % der TIGIT+-Zellen waren PD-1+, und mehr als 90 % der PD-1+-Zellen waren TIGIT+. In der Tonsille nahm die Expression vom interfollikulären Bereich zum Keimzentrum hin zu; unter den entzündlichen Erkrankungen war das Signal bei Hashimoto-Thyreoiditis am stärksten.[1]
TIGIT+-Lymphozyten fanden sich in allen 86 untersuchten Tumorentitäten, mit erheblicher Variabilität innerhalb und zwischen den Entitäten und besonders hohen Dichten in Plattenepithelkarzinomen verschiedener Herkunft.[1] Beim Hodgkin-Lymphom waren 9–99 % (Median 86 %) der lymphoiden Hintergrundzellen TIGIT+, wobei TIGIT und PD-1 in denselben Zellen lokalisierten.[2]TIGIT wird deshalb als inhibitorischer Checkpoint-Rezeptor des Tumormikromilieus erforscht. Klon TG1 ist ein Forschungswerkzeug für solche Studien; er trägt keine diagnostische oder therapeutische Aussage.
Zahlen in eckigen Klammern verweisen auf die Publikationsliste unten. Targetbiologie und klonspezifische Produktaussagen bleiben getrennt.
P·07 Publikationen
Alle elf Studien nennen im Methodenteil Klon TG1 oder die Katalognummer DIA-TG1. Publikationstitel werden wörtlich zitiert; ein im Titel genannter Biomarker ist Gegenstand der Studie, kein ONCOdianova-Produkt. Klonspezifische Evidenz und allgemeine TIGIT-Biologie stehen in getrennten Abschnitten. Publizierte Plattform- und Verdünnungsangaben belegen die jeweilige wissenschaftliche Verwendung — sie sind keine pauschale Garantie für jedes Laborprotokoll. Kongressposter (AACR 2018) stehen gesondert unter Dokumente und werden hier nicht mitgezählt.
P·08 FAQ
TG1 ist ein monoklonaler Mausantikörper gegen humanes TIGIT (Katalognummer DIA-TG1-M) und wird als Forschungsreagenz eingesetzt. Klonspezifisch publizierte Anwendungen umfassen IHC an FFPE-Gewebe, Brightfield-IHC und Fluoreszenz-Multiplex-IHC.
Ja. Mehrere begutachtete Publikationen nennen TG1 oder DIA-TG1 ausdrücklich und dokumentieren den Einsatz an humanem FFPE-Material.
Der Hersteller nennt für IHC einen Ausgangsbereich von 1:50 bis 1:150 (1:50 bei Biotin/Streptavidin-basierter Detektion, 1:100 bis 1:150 bei Polymer-basierter Detektion). Publizierte Bedingungen reichen je nach Studie und Verfahren von 1:25 bis 1:150. Jedes Labor muss die optimale Bedingung für sein eigenes Verfahren validieren.
Eine hitzeinduzierte Epitopdemaskierung ist erforderlich. Der Hersteller empfiehlt eine stringente Hitzevorbehandlung im Autoklav bei 121 °C für 5 Minuten in Tris-EDTA-Citrat-Puffer, pH 7,8 (TEC-Puffer); das dokumentierte Leica-Bond-RX-Protokoll verwendet eine High-pH-Demaskierung (ER2, pH 9,0, 100 °C, 20 min).
Ja. Der Hersteller hat ein Leica-Bond-RX-Protokoll dokumentiert (Tech Note V1). Unabhängige begutachtete Studien berichten zusätzlich den Einsatz auf dem Dako Autostainer Link 48 und Agilent Omnis. Die Bedingungen aus diesen Quellen sind Ausgangspunkte und müssen im eigenen Labor validiert werden.
Der Hersteller gibt an, dass TG1 die Zellmembranen verschiedener Lymphozytensubtypen färbt und dass in einigen epithelialen Geweben, zum Beispiel beim Kolonkarzinom, eine schwache unspezifische nukleäre oder nukleoläre Färbung auftreten kann. Tonsille ist die empfohlene Positivkontrolle.
Ja. TG1 wurde in begutachteten Studien in Fluoreszenz-Multiplex-IHC verwendet. Die publizierten Bedingungen gelten für die jeweiligen Versuchsaufbauten und müssen bei Übertragung auf andere Systeme erneut optimiert werden.
TG1 und TG2 sind zwei getrennte monoklonale Maus-Hybridomklone gegen humanes TIGIT mit eigenen Katalognummern (DIA-TG1-M und DIA-TG2-M). TG1 ist der klonspezifisch publizierte Klon: Elf begutachtete Studien nennen TG1 oder DIA-TG1 im Methodenteil, und er trägt die RRID AB_3750391. TG2 ist durch ein eigenes Datenblatt dokumentiert und zeigt eine höhere Affinität, stärkere Tonsillen-Färbeintensität und höhere Verdünnbarkeit im Vergleich zu TG1 (dokumentiert auf der TG2-Seite). Evidenz des einen Klons wird nicht auf den anderen übertragen.
Klon TG1. Elf begutachtete Studien nennen TG1 oder DIA-TG1 im Methodenteil und dokumentieren IHC an humanem FFPE-Gewebe, einschließlich Hellfeld-IHC, automatisierter Plattformen und Fluoreszenz-Multiplex-IHC. Für Klon TG2 wurde keine begutachtete Publikation identifiziert.
Elf begutachtete Studien nennen TG1 oder DIA-TG1 im Methodenteil — zu lymphatischem Gewebe, Entzündung und Krebs (Blessin 2019), Hodgkin-Lymphom (Li 2018; Annibali 2021), Seminom (Hinsch 2019), Gallenblasenkarzinom (Albrecht 2021), nicht-kleinzelligem Lungenkarzinom (Mori 2023), kutanem Plattenepithelkarzinom und Keratoakanthom (Lonsdorf 2024), Merkelzellkarzinom (Toberer 2025), kolorektalem Karzinom (Murakami 2022), Melanom (Niebel 2022) und Uveamelanom (Koch 2025). Die vollständige Liste mit DOI und PMID steht im Publikationsabschnitt dieser Seite.
Humane Tonsille. Der Hersteller nennt Tonsille als Positivkontrolle; eine publizierte Studie verwendete zusätzlich Tonsillen-Keimzentren als Positivkontrolle auf einer automatisierten Plattform.
Ein membranöses Färbemuster verschiedener Lymphozytensubtypen. In der publizierten TMA-Studie wurde TIGIT mit TG1 in CD8+-, CD4+- und FOXP3+-T-Zellen sowie NK-Zellen nachgewiesen, nicht aber in B-Zellen, Makrophagen oder dendritischen Zellen.
Klon TG1: Begutachtete Studien dokumentieren seine Verwendung in Fluoreszenz-Multiplex-IHC an humanem FFPE-Gewebe. Für Klon TG2 wurde keine publizierte Multiplex-Studie identifiziert; Multiplex-Evidenz wird zwischen den Klonen nicht übertragen.
Ja. Die Research Resource Identifier lautet AB_3750391 und ist dem Produkt DIA-TG1-M, Klon TG1, zugeordnet.
Nein. TG1 ist ausschließlich für Forschungszwecke bestimmt und nicht für diagnostische oder therapeutische Verfahren vorgesehen.
P·09 Dokumente
Produktdaten, Anwendungshinweise, Referenzen und Abbildungen A–D.
PDF herunterladen ↓Manuelles und Leica-Bond-RX-Färbeverfahren, Tonsille (100×/200×/400×), Demaskierungsvergleich und Western-Blot-Abbildung.
PDF herunterladen ↓Sicherheitsdatenblatt.
PDF herunterladen ↓Die bisherige oncodianova.com bot diese drei AACR-2018-Poster-PDFs zum Download an. Es sind Kongressbeiträge, keine begutachteten (peer-reviewed) Publikationen; sie werden in der klonspezifischen Publikationsliste (P·07) nicht mitgezählt.
„Prevalence of TIGIT expression in normal tissues, inflammation, and cancer.“ Blessin NC et al., Institut für Pathologie, Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf; Dianova GmbH, Hamburg.
PDF herunterladen ↓„High variability of TIGIT expression in Hodgkin’s lymphoma.“ Simon R et al., Institut für Pathologie, Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf; Dianova GmbH, Hamburg.
PDF herunterladen ↓„Expression and Significance of PVR-TIGIT/CD226, An Immune Checkpoint Axis in Small Cell Lung Cancer.“ Yu H et al.; Daten bereitgestellt vom Hirsch Biomarker Analysis Laboratory, University of Colorado Denver.
PDF herunterladen ↓Die originalen Website-Meldungen von 2018/2020 zu diesen Postern sind unverändert im wissenschaftlichen Archiv erhalten.
Bestellung. ONCOdianova-Produkte werden über unseren Vertriebspartner BIOZOL Diagnostica Vertrieb GmbH, Oehleckerring 11–13, 22419 Hamburg, bezogen — Bestellanfragen per E-Mail: order@biozol.de (CC info@oncodianova.com). Siehe auch Bestellinformationen und Vertrieb (in Vorbereitung).
Datenblatt V17 (25.02.2025) ist das aktuelle Datenblatt für DIA-TG1-M. In den Dokumenten genannte historische Produktformate (DIA-TG1, 200 µg) sind keine Spezifikation von DIA-TG1-M. Verwandt: TG2 (eigenständiger anti-TIGIT-Klon) · R12 (CD112R/PVRIG) · KK3 (CD73/NT5E) · TC8 (CD8) · FX3 (FOXP3).